Atividade inibitória do verniz de araçá (Psidium cattleianum Sabine) sobre amostras de Streptococcus mutans “in vitro”

Autores

  • Ellen Cristina Gaetti Jardim
  • Elerson Gaetti Jardim Júnior
  • Christiane Marie Schweitzer
  • Ana Cláudia Okamoto

Resumo

O objetivo desse estudo foi avaliar a atividade antimicrobiana do extrato aquoso de P. cattleianum e de um verniz contendo o extrato dessa planta sobre cocos cariogênicos, bem como determinar a velocidade da atividade inibitória de contato do extrato aquoso. Para realização dos testes utilizaram-se 10 isolados clínicos e a cepa de referência S. mutansATCC 35688. O extrato aquoso de araçá foi obtido por decocção de 100g de pó de folhas desidratadas de araçá em 600 mL de água deionizada. O preparo do verniz foi realizado incorporando-se volumes iguais do extrato de araçá e de base composta de resinas naturais e sintéticas. A avaliação da atividade antimicrobiana do extrato de araçá foi realizada por meio do método de diluição em ágar, enquanto a atividade do verniz com o extrato da planta foi avaliada qualitativamente por meio do método de difusão em ágar. Determinou-se também a ação antimicrobiana de contato do extrato de araçá sobre células microbianas planctônicas. Verificou-se que o extrato de araçá inibiu todos os microrganismos testados, sendo que a incorporação do conteúdo resinoso do verniz não impediu a atividade inibitória. A cinética da ação antimicrobiana evidenciou que o extrato de araçá pode exercer atividade após curto período de tempo de contato. Os resultados permitiram concluir que o extrato aquoso de araçá e a formulação de verniz contendo o extrato dessa planta podem vir a constituir importante instrumento no controle do biofilme cariogênico após a avaliação modelos animais de estudo.

Descritores: Agente de Controle de Microrganismos; Psidium; Streptococcus mutans

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Referências

García-Cortés JO, Medina-Solí CE, Loyola-Rodriguez JP et al. Dental caries`s experience, prevalence and severity in Mexican adolescents and young adults,” Rev Salud Pública. 2009; 11(1):82-91.

Smith EG, Spatafora GA. Gene regulation in S. mutans: complex control in a complex environment. J Dent Res. 2012; 91(2):133-41.

Smith DJ, Mattos-Graner RO. Secretory immunity following mutans streptococcal infection or immunization. Curr Top Microbiol Immunol. 2008; 319:131-56.

Takashima Y, Fujita K, Ardin AC, Nagayama K, Nomura R2, Nakano K, Matsumoto-Nakano M. Characterization of the dextran-binding domain in the glucan-binding protein C of Streptococcus mutans. J Appl Microbiol. 2015; 119:1148-57.

Bennadi D, Reddy V, Kshetrimayum N. Influence of genetic factor on dental caries. Ind J Res Pharm Biotech. 2014; 2(3):1196-1207.

Costalonga M, Herzberg MC. The oral microbiome and the immunobiology of periodontal diseaseand caries. Immunol Lett. 2014; 162:22-38.

Koo M, Pearson SK, Scott-Anne K, Abranches J, Cury JA, Rosalen PL, Park YK, Marquis RE, Bowen WH. Effects of apigenin and tt-farnesol on glucosyltransferase activity, biofilm viability and caries development in rats. Oral Microbiol Immunol. 2002; 17(6):337-42.

Pienihäkkinen K, Jokela J. Clinical outcomes of risk-based caries prevention in preschool-aged children. Commun Dent Oral Epidemiol. 2002; 30(2): 143-50.

Thenisch NL, Bachmann LM, Imfeld T, Leisebach Minder T, Steurer J. Are mutans streptococci detected in preschool children a reliable predictive factor for dental caries risk? A systematic review. Caries Res. 2006; 40(5):366-74.

Langendijk-Genevaux PS, Grimm WD, van der Hoeven JS. Sulfate-reducing bacteria in relation with other potential periodontal pathogens. J Clin Periodontol. 2001; 28(12):1151-7.

Narvai PC, Frazão P, Roncalli AG, Antunes JLF. Cárie dentária no Brasil: declínio, polarização, iniquidade e exclusão social. Rev Panam Salud Publica. 2006; 19(6):385-93.

Tanner T, Kämppi A, Päkkilä J, Patinen P, Rosberg J, Karjalainen K, Järvelin M-R, Tjäderhane L, Anttonen V. Prevalence and polarization of dental caries among young, healthy adults: cross-sectional epidemiological study. Acta Odontol Scand. 2013; 71(6): 1436-42.

Lee SS, Zhang W, Li Y. The antimicrobial potential of 14 natural herbal centifrices. Results of an in vitro diffusion method study. J Amer Dent Assoc. 2004; 135(8):1133-41.

Azizi A, Aghayan S, Zaker S, Shakeri M, Entezari N, Lawaf S. In vitro effect of zingiber officinale extract on growth of Streptococcus mutans and Streptococcus sanguinis. Int J Dent. 2015. Doi 10.1155/2015/489842

Cheng L, Li J, He L, Zhou X. natural products and caries prevention. Caries Res. 2015; 49(suplem.1):38-45.

Prabu GR, Gnanamani A, Sadulla S. Guaijaverin - a plant flavonoid as potential antiplaque agent against Streptococcus mutans. J Appl Microbiol. 2006; 101(2):487-95.

Brighenti FL, Gaetti-Jardim Jr E, Danelon M, Evangelista GV, Delbem ACB. Effect of Psidium cattleianum leaf extract on enamel demineralisation and dental biofilm composition in situ. Arch Oral Biol. 2012; 57(8):1034-40.

Brighenti FL, Luppens SBI, Delbem ACB, Deng DM, Hoogenkamp MA, Gaetti-Jardim Jr E, Dekker HL, Crielaard W, ten Cate JM. Effect of Psidium cattleianum leaf extract on z viability, protein expression and acid production. Caries Res. 2008; 42(2):148-54.

Castilho AR, Pardi V, Pereira CV. Dental caries experience in relation to salivary findings and molecular identification of S. mutans and S. sobrinus in subjects with Down syndrome. Odontology. 2011; 99(2):162-7.

Hammer KA, Carson CF, Riley TV. Antimicrobial activity of essential oils and other plant extracts. J Appl Microbiol. 1999; 86(6):985-91.

Landry RM, An D, Hupp JT, Singh PK, Parsek MR. Mucin-Pseudomonas aeruginosa interactions promote biofilm formation and antibiotic resistance. Mol Microbiol. 2006; 59(1):142-51.

Marsh PD. Dental plaque as a microbial biofilm. Caries Res. 2004; 38(3): 204-11.

Guggenheim B, Guggenheim M, Gmür R, Giertsen E, Thurnheer T. Application of the Zürich biofilm model to problems of cariology. Caries Res. 2004; 38(3): 212-22.

Bruschi ML, Panzeri H, Freitas O, Lara EHG, Gremião MPD. Sistemas de liberação de fármaco intrabolsa periodontal. Rev Bras Cienc Farm. 2006; 42(1):29-47.

Prajapati RA, Raol BV. The study on the efficacy of some herbal extracts for the control of dental caries pathogen-Streptococcus mutans. Int J Pharm Sci Health Care. 2014; 1(4):49-58.

Ozaki F, Pannuti CM, Imbronito AV, Pessotti W, Saraiva L, Freitas NM, Ferrari G, Cabral VN. Eficácia de um dentifrício fitoterápico em pacientes com gengivite estabelecida- ensaio clínico aleatório. Braz Oral Res. 2006; 20(2):172-7.

Otake S, Makimura M, Kuroki T, Nishihara Y, Hirasawa M. Anticaries effects of polyphenolic compounds from Japanese green tea. Caries Res. 1991; 25(6):438-43.

Landucci LF, Oliveira LD, Brandão EHS. Koga-Ito C, Gaetti-Jardim Jr E, Jorge AOC. Efeitos de Coffea arabica sobre a aderência de Streptococcus mutans à superfície de vidro. Ciênc Odontol Bras. 2003; 6(3):58-64.

Matsumoto M, Tsuji M, Okuda J, Sasaki H, Nakano K, Osawa K, Shimura S, Ooshima T. Inhibitory effects of cacao bean husk extract on plaque formation in vitro and in vivo. Eur J Oral Sci. 2004; 112(3):249-56.

Hosseini F, Adlgostar A, Sharifnia F. Antibacterial activity of Pistacia atlantica extracts on Streptococcus mutans biofilm. Int Res J Biological Sci. 2013; 2(2):1-7.

Razak FA, Othman RY, Rahim ZHA. The effect of Piper betle and Psidium guajava extracts on the cell-surface hydrophobicity of selected early settlers of dental plaque. J Oral Sci. 2006; 48(2):71-5.

Gaetti-Jardim Jr E, Landucci LF, Okamoto AC, Akeshigue H. Antimicrobial activity of plants infusions on oral fusobacteria and their adherence to human erythrocytes. Arch Health Invest. 2013; 2(1):3-9.

Alves, H. M. A diversidade química das plantas como fonte de fitofármacos. Cad Tem Quím Nova Escola. 2001; 3(5):11-15.

Medina AL, Haas LIR, Chaves FC, Salvador M, Zambiazi RC, Silva WP, Nora L, Rombaldi CV. Araça (Psidium cattleianum Sabine) fruit extracts with antioxidant and antimicrobial activities and antiproliferative effect on human cancer cells. Food Chem. 2011; 128 (4): 916-22.

Costa TD, Vieira S, Andrade SF, Maistro EL. Absence of mutagenicity effects of Psidium cattleyanum Sabine (Myrtaceae) extract on peripheral blood and bone marrow cells of mice. Genet Mol Res 2008;7:679-86.

Gutiérrez RM, Mitchell S, Solis RV. Psidium guajava: a review of its traditional uses, phytochemistry and pharmacology. J Ethnopharmacol. 2008;117(1):1-27.

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Publicado

2016-01-31

Como Citar

Gaetti Jardim, E. C., Gaetti Jardim Júnior, E., Marie Schweitzer, C., & Okamoto, A. C. (2016). Atividade inibitória do verniz de araçá (Psidium cattleianum Sabine) sobre amostras de Streptococcus mutans “in vitro”. ARCHIVES OF HEALTH INVESTIGATION, 4(6). Recuperado de https://archhealthinvestigation.com.br/ArcHI/article/view/1291

Edição

Seção

Artigos